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酶活力的测定 国标

2022-10-05 来源:榕意旅游网
木瓜蛋白酶活力的测定

一、试剂与溶液

1. 三氯乙酸

称取三氯乙酸6.54g,用水溶解并定容至100mL。 2. L-酪氨酸标准储备溶液(100μg/mL)

精确称取L-酪氨酸0.1000g,用1mol/L盐酸溶液60mL溶解后定容至100mL,即为1mg/mL酪氨酸溶液。

吸取1mg/mL酪氨酸溶液10.00mL,用0.1mol/L盐酸溶液定容至100mL,即得到100μg/mL的L-酪氨酸标准储备溶液。 3. 氢氧化钠溶液(20g/L)

称取氢氧化钠2g,加水搅拌溶解。待溶液到室温后 ,以水定容至100mL,搅拌均匀。 4. 盐酸溶液

1mol/L:取22.5ml的浓盐酸溶液,加水定容至250ml。 0.1mol/L:取1.8ml的浓盐酸溶液,加水定容至200ml。 5. 酪蛋白溶液(10.0g/L)

称取标准酪蛋白1g,用少量氢氧化钠溶液润湿,加入相应的缓冲溶液约80mL,在沸水浴中100℃加热回流30min。冷却到室温后转入100mL容量瓶中,用适宜的pH缓冲溶液稀释至刻度。此溶液在冰箱内贮存,有效期为3d。使用前重新确认并调整pH至规定值。

二、 分析步骤

1. 标准曲线的绘制

L-酪氨酸标准溶液:按表1配制。L-酪氨酸稀释液应在稀释后立即进行测定。

表1 L-酪氨酸标准溶液

管号 酪氨酸标准溶液 酪氨酸标准储备液体积 加水体积 (μg/mL) 0 1 2 3 4 5 0 10 20 30 40 50 (mL) 0 1 2 3 4 5 (mL) 10 9 8 7 6 5 分别取上述所配的溶液,以0管为空白,利用紫外分光光度计于波长275nm下测定吸光度。以吸光度A为纵坐标,酪氨酸的浓度c为横坐标,绘制标准曲线。利用回归方程,计算出吸光度为1时的酪氨酸的量(μg),即为吸光常数K值。其K值应在130~135范围内,如不符合,需重新配制试剂,进行实验。 2. 样品的测定

待测酶液的制备:称取酶样品1g。然后用磷酸缓冲溶液充分溶解,定容至50ml。

测定:先将酪蛋白溶液置于(40±0.2)℃恒温水浴中,预热5min,

然后按以下流程操作:试管A(空白)

↓ 加酶液2.00mL

↓(40±0.2)℃,2min 加三氯乙酸4.00mL(摇匀) ↓(40±0.2)℃,10min 加酪蛋白溶液2.00mL(摇匀)↓

取出静止10min,过滤 (慢速定性滤纸) 定容至100ml

↓ 测滤液吸光度

试管B(酶试样,需三个平行样)

↓ 加酶液2.00mL

↓(40±0.2)℃,2min 加酪蛋白溶液2.00mL(摇匀) ↓(40±0.2)℃,10min 加三氯乙酸4.00mL(摇匀)

取出静止10min,过滤 (慢速定性滤纸) 定容至100ml

↓ 测滤液吸光度

三、计算过程

从标准曲线上读出样品最终稀释液的酶活力,单位为u/mL。样品的酶活力按下式计算:

X2= (X1×V×n×8)/(2×m ×10) 式(1) 式(1)中:

X1—由标准曲线所得的样品最终稀释液的酶活力,u/mL; X2—样品的酶活力,u/g;

V—溶解样品所使用量瓶的体积,mL; n—稀释倍数;

8—反应试剂的总体积,mL; 2—吸取酶液的体积,mL; m—样品的质量,g;

1/10—反应时间10min,以1min计。

1、标线的绘制

管号 酪氨酸的浓度(μg/mL) 1 2 3 4 5 10 20 30 40 50 0.0850 0.1504 0.2329 0.3011 0.3785 吸光度A 峰所在的波长λ(nm) 274 274 724 274 274 酪氨酸标准曲线0.4000y = 0.0074x + 0.0083R2 = 0.999吸光度A0.30000.20000.10000.00000102030浓度C(μg/mL)405060

∵吸光度A=1时的酪氨酸的量(μg),即为吸光常数K值

∴求得

K=134.0135

2、样品的测定

管号 吸光度A 峰所在的波长λ 空白 平行1 平行2 0.2160 0.2160 没有峰 273 273 28.07 28.07 由标线所得浓度 C(μg/mL )

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